茶树修剪物茶树修剪物的水浸出物还田对茶园土壤酶活性的影响
茶叶机采模式下产生大量修剪物，多数修剪物直接还田对茶园土壤酶活性产生影响。而土壤酶活性对分析土壤肥力状况有较好的指示作用。本实验将研究茶树修剪物还田对土壤酶活性的影响，以不同浓度的茶树修剪物和茶树修剪物的水浸出物处理土壤，测定其过氧化氢酶、脲酶和蔗糖酶的活性。结果表明土壤中的蔗糖酶、脲酶、多酚氧化酶活性明显上升。
目录
摘要1
关键词1
Abstract1
Key words1
引言1
1材料与方法1
1.1试验材料 1
1.2试验方法 2
1.2.1试验设计2
1.2.2试验添加物及其处理2
1.3研究方法2
1.3.1土壤过氧化氢酶活性采用高锰酸钾滴定法测定2
1.3.2蔗糖酶活性采用水杨酸比色法测定2
1.3.3脲酶活性采用靛酚蓝比色法测定2
2结果与分析 2
2.1不同处理对土壤蔗糖酶活性的影响2
2.2不同处理对土壤过氧化氢酶活性的影响4
2.3不同处理对土壤脲酶活性的影响5
2讨论 7
致谢8
参考文献8
图1 茶树修剪物对土壤蔗糖酶活性的影响3
图2 茶树修剪物的水浸出物对土壤蔗糖酶活性的影响4
图3 茶树修剪物对土壤过氧化氢酶活性的影响5
图4 茶树修剪物的水浸出物对土壤过氧化氢酶活性的影响5
图5 茶树修剪物对土壤脲酶活性的影响6
图6 茶树修剪物的水浸出物对土壤脲酶活性的影响7
表1 不同处理对土壤蔗糖酶活性的影响3
表2 不同处理对对土壤蔗糖酶活性的影响4
表3 不同处理对土壤过氧化氢酶活性的影响6
茶树修剪物、茶树修剪物的水浸出物
还田对茶园土壤酶活性的影响
引言
引言
茶叶是劳动密集型产业，采茶用工占用比例很高，在当前茶叶产业中，采茶劳动力不足已经成为一个制约茶叶产业发展的问题，于是机械采茶应运而生，发展 *好棒文|www.hbsrm.com +Q: #351916072#
越来越快。机采离不开修剪，机采模式下大量的茶树枝叶等修剪物留在茶园中，对茶园土壤产生直接影响。修剪产生的废弃枝叶，是一种数量相当可观的资源。茶树修剪物中含各种有机质和无机元素，返还土壤腐烂降解后，会改变茶树根际土壤环境。有研究表明，经茶树修剪叶处理过的土壤有机质含量显著提高。可见，茶树修剪物对茶树的生长有着极其重要不可忽略的作用。本实验通过测定经不同浓度茶树修剪物及茶树修剪物的水浸提物处理过的土壤酶活性来研究茶树修剪物对茶树土壤酶活性的影响。
1材料与方法
1.1试验材料
供试土壤：采自南京中山陵茶场茶园（黄棕壤）,采样深度020 cm(将05 cm的表土层清理剔除)多点采样。
1.2试验方法
1.2.1实验设计
将上述从中山陵茶园采集的新鲜土样充分均匀混合过2 mm筛后，一部分装入无菌塑料袋内，贮存于4 ℃的冰箱中；另一部分置于室内自然风干，研磨、过筛，供土壤微生物生化特性测定。采集的土壤土壤含水量为调节至土壤田间持水量的60%，在室内温度为25 ℃的环境下预培养十天。实验设置三个浓度梯度（高、中、低），每个浓度梯度重复三次，同时设置空白对照组。每个塑料盆中有2 Kg土，放于室温下培养10周。用保鲜膜封住塑料盆口（在保鲜膜中间留一个气孔，利于通气）。在培养期间，每隔三天测定土壤含水量并用蒸馏水补水，保持田间持水量为60%。在0、2、4、6、10周分别取样测定其过氧化氢酶、脲酶和蔗糖酶的活性。
1.2.2实验添加物及其处理
茶树修剪物：将中山陵成龄茶园专门管理，茶树修剪物于春茶结束后在五月中旬进行统一修剪，将修剪物带回实验室，先进行杀青或者是微波固样，以免多酚在烘干过程中被损耗。100 ℃烘干，粉碎过0. 25 mm 筛备用。
茶树修剪物的水浸出物：将粉碎的茶树修剪物与水按1：10（粉末：蒸馏水水）的比例提取，沸水浴浸提20 min。同样方法浸提四次，合并滤液。浸提完毕后立即趁热用纱布过滤（16层），之后进行抽滤，将所有滤液用旋转蒸发浓缩，即得到水浸提物的浓缩液。
实验设计两个处理，每个处理各设高、中、低三个浓度梯度。实验处理：CK为不处理（空白对照）；A1为低浓度茶树修剪物5 g/Kg;A2为中浓度的茶树修剪物10 g/Kg;A3为高浓度的茶树修剪物20 g/Kg;B1为A1等量的茶树修剪物的水浸提物;B2为A2等量的茶树修剪物的水浸提物;B3为A3等量的茶树修剪物的水浸提物.
1.3研究方法
1.3.1土壤过氧化氢酶活性采用高锰酸钾滴定法测定 分别取2 g土壤样品于三角瓶中，加入40 ml蒸馏水，加入5 ml10.3%的H2O2溶液，立即将三角瓶口密封起来。震荡20分钟后加入1 ml饱和铝钾矾，立即过滤于盛有5 ml 1.5 mol硫酸的三角瓶中，滤干后，吸取滤液15 ml，用0.02 mol/L高锰酸钾滴定至紫红色。同时做无土对照。
1.3.2蔗糖酶活性采用水杨酸比色法测定 称取2 g土壤，置于50 mL三角瓶中，注入15 ml 8%蔗糖溶液，5 ml pH 5.5磷酸缓冲液和5滴甲苯。摇匀混合物后，放入恒温箱，在37 ℃下培养24 h。到时取出，迅速过滤。从中吸取滤液0.5 ml，注入小试管中，加1.5 ml DNS试剂，并在沸腾的水浴锅中加热5 min，随即将试管移至自来水流下冷却3 min。溶液因生成3氨基5硝基水杨酸而呈橙黄色，最后将试管内液体移至100 ml容量瓶中，用蒸馏水定容至100 ml，并在分光光度计上于508 nm处进行比色。（为了消除土壤中原有的蔗糖、葡萄糖而引起的误差，每一土样需做无基质对照，整个试验需做无土壤对照；如果样品吸光值超过标曲的最大值，则应该增加分取倍数或减少培养的土样。）
1.3.3脲酶活性采用靛酚蓝比色法测定 称取5 g土样于50 ml三角瓶中，加1 ml甲苯，振荡均匀，15 min后加10 ml10%尿素溶液和20 ml PH 6.7柠檬酸盐缓冲溶液，摇匀后在37 ℃恒温箱培养24小时。培养结束后过滤，过滤后取3 ml滤液加入50 ml容量瓶中，再加4ml苯酚钠溶液和3 ml次氯酸钠溶液，随加随摇匀。20 min后显色，定容。1 h内在分光光度计与578 nm波长处比色。（靛酚的蓝色在1h内保持稳定）。
2结果与分析
2.1不同处理对土壤蔗糖酶活性的影响
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摘要1
关键词1
Abstract1
Key words1
引言1
1材料与方法1
1.1试验材料 1
1.2试验方法 2
1.2.1试验设计2
1.2.2试验添加物及其处理2
1.3研究方法2
1.3.1土壤过氧化氢酶活性采用高锰酸钾滴定法测定2
1.3.2蔗糖酶活性采用水杨酸比色法测定2
1.3.3脲酶活性采用靛酚蓝比色法测定2
2结果与分析 2
2.1不同处理对土壤蔗糖酶活性的影响2
2.2不同处理对土壤过氧化氢酶活性的影响4
2.3不同处理对土壤脲酶活性的影响5
2讨论 7
致谢8
参考文献8
图1 茶树修剪物对土壤蔗糖酶活性的影响3
图2 茶树修剪物的水浸出物对土壤蔗糖酶活性的影响4
图3 茶树修剪物对土壤过氧化氢酶活性的影响5
图4 茶树修剪物的水浸出物对土壤过氧化氢酶活性的影响5
图5 茶树修剪物对土壤脲酶活性的影响6
图6 茶树修剪物的水浸出物对土壤脲酶活性的影响7
表1 不同处理对土壤蔗糖酶活性的影响3
表2 不同处理对对土壤蔗糖酶活性的影响4
表3 不同处理对土壤过氧化氢酶活性的影响6
茶树修剪物、茶树修剪物的水浸出物
还田对茶园土壤酶活性的影响
引言
引言
茶叶是劳动密集型产业，采茶用工占用比例很高，在当前茶叶产业中，采茶劳动力不足已经成为一个制约茶叶产业发展的问题，于是机械采茶应运而生，发展 *好棒文|www.hbsrm.com +Q: #351916072#
越来越快。机采离不开修剪，机采模式下大量的茶树枝叶等修剪物留在茶园中，对茶园土壤产生直接影响。修剪产生的废弃枝叶，是一种数量相当可观的资源。茶树修剪物中含各种有机质和无机元素，返还土壤腐烂降解后，会改变茶树根际土壤环境。有研究表明，经茶树修剪叶处理过的土壤有机质含量显著提高。可见，茶树修剪物对茶树的生长有着极其重要不可忽略的作用。本实验通过测定经不同浓度茶树修剪物及茶树修剪物的水浸提物处理过的土壤酶活性来研究茶树修剪物对茶树土壤酶活性的影响。
1材料与方法
1.1试验材料
供试土壤：采自南京中山陵茶场茶园（黄棕壤）,采样深度020 cm(将05 cm的表土层清理剔除)多点采样。
1.2试验方法
1.2.1实验设计
将上述从中山陵茶园采集的新鲜土样充分均匀混合过2 mm筛后，一部分装入无菌塑料袋内，贮存于4 ℃的冰箱中；另一部分置于室内自然风干，研磨、过筛，供土壤微生物生化特性测定。采集的土壤土壤含水量为调节至土壤田间持水量的60%，在室内温度为25 ℃的环境下预培养十天。实验设置三个浓度梯度（高、中、低），每个浓度梯度重复三次，同时设置空白对照组。每个塑料盆中有2 Kg土，放于室温下培养10周。用保鲜膜封住塑料盆口（在保鲜膜中间留一个气孔，利于通气）。在培养期间，每隔三天测定土壤含水量并用蒸馏水补水，保持田间持水量为60%。在0、2、4、6、10周分别取样测定其过氧化氢酶、脲酶和蔗糖酶的活性。
1.2.2实验添加物及其处理
茶树修剪物：将中山陵成龄茶园专门管理，茶树修剪物于春茶结束后在五月中旬进行统一修剪，将修剪物带回实验室，先进行杀青或者是微波固样，以免多酚在烘干过程中被损耗。100 ℃烘干，粉碎过0. 25 mm 筛备用。
茶树修剪物的水浸出物：将粉碎的茶树修剪物与水按1：10（粉末：蒸馏水水）的比例提取，沸水浴浸提20 min。同样方法浸提四次，合并滤液。浸提完毕后立即趁热用纱布过滤（16层），之后进行抽滤，将所有滤液用旋转蒸发浓缩，即得到水浸提物的浓缩液。
实验设计两个处理，每个处理各设高、中、低三个浓度梯度。实验处理：CK为不处理（空白对照）；A1为低浓度茶树修剪物5 g/Kg;A2为中浓度的茶树修剪物10 g/Kg;A3为高浓度的茶树修剪物20 g/Kg;B1为A1等量的茶树修剪物的水浸提物;B2为A2等量的茶树修剪物的水浸提物;B3为A3等量的茶树修剪物的水浸提物.
1.3研究方法
1.3.1土壤过氧化氢酶活性采用高锰酸钾滴定法测定 分别取2 g土壤样品于三角瓶中，加入40 ml蒸馏水，加入5 ml10.3%的H2O2溶液，立即将三角瓶口密封起来。震荡20分钟后加入1 ml饱和铝钾矾，立即过滤于盛有5 ml 1.5 mol硫酸的三角瓶中，滤干后，吸取滤液15 ml，用0.02 mol/L高锰酸钾滴定至紫红色。同时做无土对照。
1.3.2蔗糖酶活性采用水杨酸比色法测定 称取2 g土壤，置于50 mL三角瓶中，注入15 ml 8%蔗糖溶液，5 ml pH 5.5磷酸缓冲液和5滴甲苯。摇匀混合物后，放入恒温箱，在37 ℃下培养24 h。到时取出，迅速过滤。从中吸取滤液0.5 ml，注入小试管中，加1.5 ml DNS试剂，并在沸腾的水浴锅中加热5 min，随即将试管移至自来水流下冷却3 min。溶液因生成3氨基5硝基水杨酸而呈橙黄色，最后将试管内液体移至100 ml容量瓶中，用蒸馏水定容至100 ml，并在分光光度计上于508 nm处进行比色。（为了消除土壤中原有的蔗糖、葡萄糖而引起的误差，每一土样需做无基质对照，整个试验需做无土壤对照；如果样品吸光值超过标曲的最大值，则应该增加分取倍数或减少培养的土样。）
1.3.3脲酶活性采用靛酚蓝比色法测定 称取5 g土样于50 ml三角瓶中，加1 ml甲苯，振荡均匀，15 min后加10 ml10%尿素溶液和20 ml PH 6.7柠檬酸盐缓冲溶液，摇匀后在37 ℃恒温箱培养24小时。培养结束后过滤，过滤后取3 ml滤液加入50 ml容量瓶中，再加4ml苯酚钠溶液和3 ml次氯酸钠溶液，随加随摇匀。20 min后显色，定容。1 h内在分光光度计与578 nm波长处比色。（靛酚的蓝色在1h内保持稳定）。
2结果与分析
2.1不同处理对土壤蔗糖酶活性的影响
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