老鸦瓣鳞茎解除休眠过程中碳代谢主要指
目录
摘要3
关键词3
引言3
1 材料与方法3
1.1 材料3
1.2 实验仪器3
1.3 方法3
1.3.1 还原糖含量测定方法3
1.3.2 淀粉酶活性测定方法3
1.3.3 蛋白质含量测定方法4
2 结果分析4
2.1 鳞茎室温和冷藏过程中还原糖含量的变化.4
2.2 鳞茎室温和冷藏过程中淀粉酶活性的变化.4
2.3 鳞茎室温和冷藏过程中可溶性蛋白含量的变化.5
2.4室温和冷藏处理下老鸦瓣播种后生物学特性.5
3 讨论6
3.1 鳞茎中碳水化合物含量的变化与打破休眠的关系.6
3.2 鳞茎中淀粉酶活性的变化与打破休眠的关系.7
3.3 鳞茎中蛋白质含量的变化与打破休眠的关系.7
3.4室温和冷藏处理下老鸦瓣播种后生物学特性分析.7
致谢7
参考文献8
Abtract9
引言
老鸦瓣鳞茎解除休眠过程中碳代谢关键指标变化研究
[摘要]目的：研究冷藏过程中老鸦瓣鳞茎的还原糖、可溶性蛋白代谢和淀粉酶活性变化规律，并探讨其变化与老鸦瓣鳞茎解除休眠的关系。方法：对室温和冷藏两种处理下的老鸦瓣鳞茎每两周测定还原糖和蛋白质含量以及淀粉酶活性。还原糖含量和淀粉酶活性的测定均采用3,5二硝基水杨酸（DNS）法；可溶性蛋白含量的测定采用考马斯亮蓝G250染色法。结果：在冷藏和室温处理过程中，还原糖含量均呈上升趋势，淀粉酶活性均先上升后下降最后略有上升，蛋白质含量呈先升后降趋势且在第6周达到峰值。冷藏处理下鳞茎中所含还原糖、蛋白质含量和淀粉酶活性各个阶段均高于室温处理。低温贮藏在一定程度上有利于鳞茎解除休眠，使之提前现苗，但也使之提前倒苗，最终冷藏处理和常温处理的生育期基本一致。结论：冷藏处理可以打破老鸦瓣鳞茎休眠，且冷藏6～10周鳞茎生理代谢活动加强，但冷藏处理未能有效延长老鸦瓣生育期。
[关键词]老鸦瓣；还原糖；可溶性蛋白；淀粉酶；解除休眠
老鸦瓣Tulipa edulis(Mi *好棒文|www.hbsrm.com +Q: ￥351916072$
q.)Baker. 是百合科郁金香属植物，分布于辽宁、江苏、江西、浙江、湖北、山东、安徽、湖南和陕西等地，朝鲜、日本也有分布，生于山坡草地或路旁[1]。中药材光慈姑为其去掉膜质皮和柔毛后的干燥鳞茎，是中国分部范围最广的郁金香原生种，具有解毒散结、行血化瘀的功效，主治痈疽、疮肿、瘰疬、咽喉肿痛、产后瘀滞[2]。近年来不断发现老鸦瓣在乳腺疾病等方面治疗效果显著，因此对老鸦瓣的需求量日益增加，而目前老鸦瓣主要来源于野生，导致老鸦瓣供不应求，使得提高老鸦瓣产量成为亟需解决的问题[3]。老鸦瓣叶片数目随生长年限增加先单叶后双叶，而只有双叶的老鸦瓣才能进行正常的有性生殖[4]。老鸦瓣的生长期短，自11月中旬叶长出地面至翌年4月下旬果实成熟仅需100d左右，与郁金香、浙贝母、川贝母等同科植物的生物学特性较为相似[4]。老鸦瓣鳞茎生理休眠的解除通常需经低温处理，但目前鲜见老鸦瓣鳞茎低温贮藏及冷藏过程中还原糖、蛋白质含量变化研究的报道。
本试验研究了冷藏过程中老鸦瓣鳞茎的还原糖、可溶性蛋白代谢变化，并记录室温和冷藏处理下的老鸦瓣鳞茎在播种后所表现的生物学特性，以期为进一步探讨老鸦瓣鳞茎的冷藏条件、研究鳞茎休眠解除的生理生化标志以及揭示其休眠机理提供依据。
1 材料与方法
1.1 材料
于2013年5月采集于安徽阜阳，经大学郭巧生教授鉴定为老鸦瓣Tulipa edulis (Miq.) Baker鳞茎。选取鳞茎盘无损伤并且其鳞片完好无病虫害，平均质量1克左右的鳞茎。用蒸馏水冲洗，洗去表面泥土，沥干后置于室内通风处自然干燥，保存备用。
1.2 实验仪器
756CRT光栅分光光度计；DKS24型电热恒温水浴锅(编号L304056)；TGL16G离心机；精密电子天平（BS142S型，瑞士Mettler Toledo上海有限公司）。
1.3 方法
对室温和冷藏（4±2℃）两种处理下的老鸦瓣鳞茎，每两周测定还原糖和蛋白质含量以及淀粉酶活性，每个处理三个重复。
1.3.1 还原糖含量的测定 称取0.5g老鸦瓣鳞茎，加少量石英砂，研磨至匀浆,放在100 mL烧杯中转移到50 ml容量瓶中加蒸馏水定容至刻度，混匀，于50℃恒温水浴中保温20 min，不时震荡，使还原糖浸出；再于 8000 r/min离心30 min，取上清液，即得还原糖提取液[5]。
还原糖含量测定采用3，5二硝基水杨酸（DNS）法[5]。
1.3.2 淀粉酶活性的测定 称取1.5 g老鸦瓣鳞茎于研钵中，加少量石英砂，研磨至匀浆，转移至100 ml容量瓶中加蒸馏水定容至刻度，混匀后在0 ℃冰水中下放置，每隔数分钟振荡一次，提取15～20 min；于8000 r/min离心30 min，取上清液备用，即为淀粉酶提取液[5]。
淀粉酶活性测定采用3，5二硝基水杨酸（DNS）法[5]。
1.3.3 蛋白质含量的测定 称取0.5 g老鸦瓣鳞茎于研钵中，加少量石英砂，研磨至匀浆，混匀，转移至50 ml容量瓶中加蒸馏水定容至刻度，每隔数分钟搅拌一次。于8000 r/min离心30 min，取上清液备用，即为蛋白质提取液[5]。
可溶性蛋白含量测定采用考马斯亮蓝G250染色法[5]。
2 结果分析
2.1 鳞茎室温和冷藏过程中还原糖含量的变化
由图1可知，老鸦瓣鳞茎在冷藏贮藏和室温贮藏两种处理下，还原糖含量变化的总体趋势基本一致，即还原糖含量明显增长，0～4周，还原糖含量平稳增长；4～8周，还原糖含量基本不变；8～10周，还原糖含量明显增长。但在冷藏和室温的处理期间，冷藏处理下老鸦瓣鳞茎中还原糖含量一直高于室温处理下鳞茎中还原糖的含量。尤其在8～10周，冷藏处理下鳞茎还原糖明显增加，期间上升了2.90%，远远高于同时期室温处理下的老鸦瓣鳞茎中还原糖含量增长的0.66%。
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