sa对强光胁迫下多花黄精生理及光合特性的影响研究
通过分析不同浓度SA在强光胁迫下对多花黄精光合及生理的影响，探究SA对多花黄精强光胁迫伤害调控的可行性。本文以盆栽多花黄精为材料，叶面喷施浓度为0.05、0.2、0.5、1.0、2.0 mmol·L-1的SA溶液，置于太阳光下，进行强光胁迫处理，以遮荫条件下和强光胁迫下喷施蒸馏水为对照，测定多花黄精叶片相关光合参数、可溶性蛋白、丙二醛含量，以及SOD、CAT、POD酶活性。结果表明，0.5 mmol·L-1的SA明显增强了多花黄精叶片SOD、CAT、POD三种酶活性，升高了可溶性蛋白含量，有效减少了强光胁迫对细胞膜的破坏，显著降低了相对电导率，同时，SA处理也增加了叶绿素和类胡萝卜素的含量，提高了多花黄精叶片的光合速率，但是随着SA浓度的升高，多花黄精叶片对强光胁迫的抵抗能力反而会下降。结论叶面喷施一定浓度的SA溶液可减轻强光胁迫对多花黄精叶片的伤害。
目录
摘要 3
关键词 3
Abstract 3
Key words 3
1 材料与方法 4
1.1 材料 4
1.2 方法 4
1.2.1 实验设计 4
1.2.2 光合参数测定 4
1.2.3 光合色素含量的测定 4
1.2.4 相关生理指标测定 5
1.2.5 实验数据处理 5
2 结果与分析 6
2.1 SA对多花黄精叶片可溶性性蛋白、丙二醛的影响 6
2.2 SA对多花黄精叶片SOD、CAT、POD活性的影响 6
2.3 SA对多花黄精叶片相对电导率的影响 7
2.4 SA对多花黄精光合特性的影响 7
3 讨论 8
3.1 强光胁迫对多花黄精叶片的伤害 8
3.2 SA对强光胁迫下多花黄精的渗透调节作用 9
3.3 SA对强光胁迫下多花黄精抗氧化酶活性的影响 9
3.4 SA对强光胁迫下多花黄精光合特性的影响 9
致谢 9
参考文献： 10
SA对强光胁迫下多花黄精生理及光合特性的影响研究
引言< *好棒文|www.hbsrm.com +Q: #351916072#
br /> 多花黄精（Polygonatum cyrtonema Hua) 为百合科黄精属多年生草本植物，以干燥根茎入药，具有降血糖、降血脂、保护心血管系统的功效，同时可以调节和增强免疫系统，还可以延缓衰老、抗炎、抗病毒、抗真菌，是一种药食兼用的大宗药材[12]。多花黄精主要分布于云南、湖南、江苏等省。近年来，黄精药用价值和营养价值不断被讨论与研究，随着黄精的知名度提高，黄精原料的需求量日益增加，不仅国内消费市场巨大，还出口韩国、日本等国家，仅依靠野生资源的采挖已远不能满足市场需求，目前掠夺式的采挖也已引起野生资源濒危，加之黄精生长年限长，资源恢复困难，因此，人工栽培多花黄精迫在眉睫[3]。目前，多花黄精的人工栽培已引起普遍重视，在云南、湖南、江苏等地已有栽培，但是由于多花黄精喜阴湿的特性，在强光下会出现植株矮小、茎秆细弱、叶脆等情况，且易被阳光灼伤。因此，如何缓解强光胁迫对多花黄精所带来的伤害，对提高多花黄精产量和质量具有重要的意义。
许多研究表明，植物叶片表面喷施水杨酸(SA)可以显著提高植物的抗热性，从而缓解高温强光胁迫所带来的伤害。SA是植物体内普遍存在的一种小分子酚类化合物，研究证实SA参与植物体内的许多生理生化过程[5]，在植物信息的传递和代谢中都起着重要作用。在植物遭到逆境胁迫时，SA能够导致逆境反应信号转导分子H2O2含量的上升，从而引发系统获得性抗性反应的产生[68]，帮助植物度过不良环境[9]。LopezDelgado[10]等报道了SA能够提高马铃薯组织的抗热性。李利红[11]的研究表明,以适宜浓度的水杨酸预先处理灌浆期的小麦叶片,可有效减小高温强光所致的氧化损伤。本研究根据多花黄精栽培过程中遇到的实际问题，采用不同浓度SA溶液处理强光胁迫下的多花黄精，以其叶片相关光合参数、膜透性、可溶性蛋白含量以及相关酶活性为指标，开展不同浓度SA溶液对强光胁迫下的多花黄精光合及生理影响的研究，探讨SA减少多花黄精强光胁迫伤害的可能性，为后期多花黄精栽培技术的改进提供依据。
1 材料与方法
1．1 材料
1.2 方法
1.2.1 实验设计
试验于2016年57月在大学温室大棚内进行，2016年5月3日，选择形态一致，大小相近的多年生黄精幼苗进行盆栽，栽种于26cm×29cm规格塑胶盆中，栽培基质为蛭石：珍珠岩：营养土为2：1：0.4，每盆栽种1棵幼苗，覆土57cm，栽种后置于大学园艺学院日光温室内，将温室进行一层遮荫网遮荫处理，然后进行常规水肥管理。缓苗两个月后，2016年7月17日开始进行水杨酸溶液处理，水杨酸设计0.05，0.2，0.5，1，2mmolL1 5个浓度，试验还设置2组对照，CK1为遮荫条件，喷施蒸馏水；CK2为太阳照射，喷施蒸馏水。于7月17日18: 00对多花黄精进行叶面喷施，以叶片的正反面浸润，向下滴液为度，每个处理3盆，共7个处理。然后从18日开始去掉遮荫网，并且每2d喷施一次处理液，也都为18:00进行喷施，连续处理5次后，于28日8:00采集各处理样本进行光合指标和生理指标的测定。
1.2.2 光合参数测定
气孔导度(Gs) 、净光合速率(Pn)、蒸腾速率(Tr)、胞间CO2含量(Ci)四项参数均由光合仪直接测得。本试验使用Li6400便携式光合仪，测定时间为8:009:00。在测定前，将仪器气路定为开放式气路，选择红蓝光源，将叶室光合有效辐射调为800μmolm2s1，样品室内气流速率调为500μmols1，参比室CO2浓度调为380410μmolmol1，样品室相对湿度调为25%～40%。在测定时，选择生长状况良好、大小一致的多花黄精植株，每株选择从顶部向下15 cm处大小基本一致、长势旺盛的2～4片小叶，并对叶片中部进行测定。每次测定均选取固定标记的叶片，每次3 个重复，每重复记录3个观测值，取其平均值作为该处理测定值。
1.2.3 光合色素含量的测定
采用95%乙醇浸泡法，称取剪碎的新鲜样品0.1g放入试管，用95%的乙醇15ml，在黑暗条件下浸泡24h，直叶片表面变白，取上清液在波长665nm、649nm、470nm下测定吸光度值。
首先，按公式①、②、③：
Ca(mgL1) = 13.95 × OD665nm – 6.88 × OD649nm；①
Cb(mgL1) = 24.96 × OD665nm – 7.32 × OD649nm；②
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摘要 3
关键词 3
Abstract 3
Key words 3
1 材料与方法 4
1.1 材料 4
1.2 方法 4
1.2.1 实验设计 4
1.2.2 光合参数测定 4
1.2.3 光合色素含量的测定 4
1.2.4 相关生理指标测定 5
1.2.5 实验数据处理 5
2 结果与分析 6
2.1 SA对多花黄精叶片可溶性性蛋白、丙二醛的影响 6
2.2 SA对多花黄精叶片SOD、CAT、POD活性的影响 6
2.3 SA对多花黄精叶片相对电导率的影响 7
2.4 SA对多花黄精光合特性的影响 7
3 讨论 8
3.1 强光胁迫对多花黄精叶片的伤害 8
3.2 SA对强光胁迫下多花黄精的渗透调节作用 9
3.3 SA对强光胁迫下多花黄精抗氧化酶活性的影响 9
3.4 SA对强光胁迫下多花黄精光合特性的影响 9
致谢 9
参考文献： 10
SA对强光胁迫下多花黄精生理及光合特性的影响研究
引言< *好棒文|www.hbsrm.com +Q: #351916072#
br /> 多花黄精（Polygonatum cyrtonema Hua) 为百合科黄精属多年生草本植物，以干燥根茎入药，具有降血糖、降血脂、保护心血管系统的功效，同时可以调节和增强免疫系统，还可以延缓衰老、抗炎、抗病毒、抗真菌，是一种药食兼用的大宗药材[12]。多花黄精主要分布于云南、湖南、江苏等省。近年来，黄精药用价值和营养价值不断被讨论与研究，随着黄精的知名度提高，黄精原料的需求量日益增加，不仅国内消费市场巨大，还出口韩国、日本等国家，仅依靠野生资源的采挖已远不能满足市场需求，目前掠夺式的采挖也已引起野生资源濒危，加之黄精生长年限长，资源恢复困难，因此，人工栽培多花黄精迫在眉睫[3]。目前，多花黄精的人工栽培已引起普遍重视，在云南、湖南、江苏等地已有栽培，但是由于多花黄精喜阴湿的特性，在强光下会出现植株矮小、茎秆细弱、叶脆等情况，且易被阳光灼伤。因此，如何缓解强光胁迫对多花黄精所带来的伤害，对提高多花黄精产量和质量具有重要的意义。
许多研究表明，植物叶片表面喷施水杨酸(SA)可以显著提高植物的抗热性，从而缓解高温强光胁迫所带来的伤害。SA是植物体内普遍存在的一种小分子酚类化合物，研究证实SA参与植物体内的许多生理生化过程[5]，在植物信息的传递和代谢中都起着重要作用。在植物遭到逆境胁迫时，SA能够导致逆境反应信号转导分子H2O2含量的上升，从而引发系统获得性抗性反应的产生[68]，帮助植物度过不良环境[9]。LopezDelgado[10]等报道了SA能够提高马铃薯组织的抗热性。李利红[11]的研究表明,以适宜浓度的水杨酸预先处理灌浆期的小麦叶片,可有效减小高温强光所致的氧化损伤。本研究根据多花黄精栽培过程中遇到的实际问题，采用不同浓度SA溶液处理强光胁迫下的多花黄精，以其叶片相关光合参数、膜透性、可溶性蛋白含量以及相关酶活性为指标，开展不同浓度SA溶液对强光胁迫下的多花黄精光合及生理影响的研究，探讨SA减少多花黄精强光胁迫伤害的可能性，为后期多花黄精栽培技术的改进提供依据。
1 材料与方法
1．1 材料
1.2 方法
1.2.1 实验设计
试验于2016年57月在大学温室大棚内进行，2016年5月3日，选择形态一致，大小相近的多年生黄精幼苗进行盆栽，栽种于26cm×29cm规格塑胶盆中，栽培基质为蛭石：珍珠岩：营养土为2：1：0.4，每盆栽种1棵幼苗，覆土57cm，栽种后置于大学园艺学院日光温室内，将温室进行一层遮荫网遮荫处理，然后进行常规水肥管理。缓苗两个月后，2016年7月17日开始进行水杨酸溶液处理，水杨酸设计0.05，0.2，0.5，1，2mmolL1 5个浓度，试验还设置2组对照，CK1为遮荫条件，喷施蒸馏水；CK2为太阳照射，喷施蒸馏水。于7月17日18: 00对多花黄精进行叶面喷施，以叶片的正反面浸润，向下滴液为度，每个处理3盆，共7个处理。然后从18日开始去掉遮荫网，并且每2d喷施一次处理液，也都为18:00进行喷施，连续处理5次后，于28日8:00采集各处理样本进行光合指标和生理指标的测定。
1.2.2 光合参数测定
气孔导度(Gs) 、净光合速率(Pn)、蒸腾速率(Tr)、胞间CO2含量(Ci)四项参数均由光合仪直接测得。本试验使用Li6400便携式光合仪，测定时间为8:009:00。在测定前，将仪器气路定为开放式气路，选择红蓝光源，将叶室光合有效辐射调为800μmolm2s1，样品室内气流速率调为500μmols1，参比室CO2浓度调为380410μmolmol1，样品室相对湿度调为25%～40%。在测定时，选择生长状况良好、大小一致的多花黄精植株，每株选择从顶部向下15 cm处大小基本一致、长势旺盛的2～4片小叶，并对叶片中部进行测定。每次测定均选取固定标记的叶片，每次3 个重复，每重复记录3个观测值，取其平均值作为该处理测定值。
1.2.3 光合色素含量的测定
采用95%乙醇浸泡法，称取剪碎的新鲜样品0.1g放入试管，用95%的乙醇15ml，在黑暗条件下浸泡24h，直叶片表面变白，取上清液在波长665nm、649nm、470nm下测定吸光度值。
首先，按公式①、②、③：
Ca(mgL1) = 13.95 × OD665nm – 6.88 × OD649nm；①
Cb(mgL1) = 24.96 × OD665nm – 7.32 × OD649nm；②
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