盐胁迫与干旱胁迫对菘蓝生理特性的影响

目录
摘要1
关键词1
引言1
1 材料与方法 1
1.1 材料1
1.2 实验设计1
1.3 测定的指标和方法2
1.3.1 可溶性蛋白含量的测定 2
1.3.2 可溶性糖含量的测定 2
1.3.3 游离脯氨酸含量的测定 2
1.3.4 超氧化物歧化酶（SOD）含量的测定2
1.3.5 过氧化氢酶（CAT）含量的测定2
1.3.6 过氧化物酶（POD）含量的测定2
1.3.7 叶绿素和类胡萝卜素含量的测定 3
1.4 数据处理3
2 结果与分析 3
2.1 盐胁迫与干旱胁迫对菘蓝渗透调节作用的影响3
2.1.1 可溶性蛋白含量 3
2.1.2 可溶性糖含量 3
2.1.3 游离脯氨酸含量 4
2.2 盐胁迫与干旱胁迫对菘蓝抗氧化酶活性的影响4
2.2.1 SOD活性4
2.2.2 POD活性4
2.2.3 CAT活性5
2.3 盐胁迫与干旱胁迫对菘蓝叶绿素含量和类胡萝卜素含量的影响5
2.3.1 叶绿素含量 5
2.3.2 类胡萝卜素含量 6
3 讨论 6
致谢6
参考文献7
Abstract7
引言
盐胁迫与干旱胁迫对菘蓝生理特性的影响
[摘要]：目的：研究盐胁迫与干旱胁迫对菘蓝生理特性的影响，为菘蓝的栽培提供理论依据。方法：采用大棚盆栽盐胁迫与干旱胁迫实验方法，测定盐胁迫、干旱胁迫与正常处理条件下菘蓝叶片的可溶性蛋白、可溶性糖、游离脯氨酸、SOD、POD、CAT、叶绿素和类胡萝卜素等生理指标含量。结果：随着盐胁迫与干旱胁迫的加深，45 d内菘蓝叶片的可溶性蛋白、可溶性糖和游离脯氨酸含量均有所增加，且盐胁迫下较明显；SOD、POD和CAT都保持较高的活性，在一定的范围内波动；叶绿素和类胡萝卜素的含量是先升高后降低的趋势。结论：盐胁迫 *好棒文|www.hbsrm.com +Q: ^351916072# 
与干旱胁迫下菘蓝会升高渗透调节物质，有利于植物吸收和保存水分；调节活性氧清除系统来维持活性氧的平衡，抵抗外界的伤害。菘蓝具有一定的抗干旱与盐胁迫的能力，且对盐较水分敏感。
[关键词]：盐胁迫；干旱胁迫；菘蓝；生理特性
菘蓝(Isatis tindigotica Fort)为一年或二年生十字花科草本植物，是中国传统中药材植物，根入药称“板蓝根”，叶入药称“大青叶”，具有清热解毒、凉血消斑之功效[1]，是用量极大且长期销售不衰的药材，具有较好的市场前景。菘蓝是深根植物，适应性很强，对自然环境和土壤要求不严，耐寒、喜温暖，在中国有较广泛的分布。
植物在生长过程中经常会遇到干旱、盐碱、高温、低温等不良环境条件的影响，导致植物水分亏缺，从而产生渗透胁迫，影响植物的生长和发育，严重时会导致植物死亡。凡是对植物生长发育不利的环境条件统称为逆境或胁迫。而另一方面，植物经过长期的逆境锻炼也会进化出一系列抵制不良环境的机制，即植物的逆境适应性。逆境影响药用植物的生长和代谢作用，直接关系到药材的产量和质量。
而且很多地区都有大片的盐碱地未能开发利用，在盐碱地上种植中草药，不但可以提高对盐碱土的有效利用，改良盐碱地土壤结构，同时可以提高该地区中草药的种植面积与规模，提升中药种植的竞争力，壮大中药产业的规模，优化产业结构，改良土壤结构，增加农民收入。己有报道一些中草药可以在盐碱地上生长，如板蓝根的种植、杜仲的引种栽培、麻黄的人工种植、拘杞的引种选优等，因而在盐碱地上种植药材是可行的。近年来，干旱现象经常发生，已成为影响作物生长发育和产量的最主要环境因素之一，干旱造成的损失最大超过其他逆境造成损失的总和[2]。因此，在以往实验室研究的基础上，开展菘蓝抗旱性和抗盐性研究，不仅有利于高效利用土地资源，也有利于提高盐碱地、干旱半干旱地区菘蓝的产量。
1 材料与方法
1.1 材料
菘蓝种子采自甘肃省张掖市，该地区属大陆性气候，干燥少雨，年平均气温6℃，有黑河水灌溉，地势平坦，土壤肥沃，物产丰饶，为全国重点建设的12个商品粮基地之一。
1.2 实验设计
盆栽实验在大学生命科学楼楼顶的透光防雨塑料大棚内进行，选择18个上口径35 cm、下口径22 cm、高28 cm的塑料盆，植入健康饱满的菘蓝种子。人工设置三个处理即土壤含水量为田间持水量的50%（CK）、盐分浓度（NaCl）为100 mmol/L的盐处理与土壤含水量为田间持水量的30%干旱处理。出苗后，正常供水1个月后进行盐胁迫与水分胁迫处理，每两天于17:00～18:00用电子秤称量盆重量，维持相应的含水量，并采取定时定量浇入盐水的方法。处理前每隔15天进行一次间苗，最后每盆留住5～6株苗。
1.3 测定的指标和方法
胁迫处理后每隔15 d采取3～5叶成熟叶片迅速装入自封袋，带回实验室，进行各项生理指标的测定，每个测定指标设置3个重复。
1.3.1 可溶性蛋白含量的测定 可溶性蛋白采用考马斯亮蓝G250法测定[3]：取新鲜菘蓝叶片0.5 g，8 ml pH 7.8的磷酸缓冲液分次研磨和洗涤至10 ml离心管中，4 000 rpm离心15 min，取上清液0.1 ml，加5 ml考马斯亮蓝G250放置反应2 min，在595 nm波长下测定光密度，通过标准曲线和公式计算样品中可溶性蛋白质含量。
1.3.2 可溶性糖含量的测定 可溶性糖采用硫酸蒽酮比色法测定[3]：采集菘蓝同一部位新鲜叶片，剪碎混匀，加少量蒸馏水和石英砂研磨后转移至带塞带刻度试管中，将试管中蒸馏水补充至8～10 ml，封口沸水浴提取30 min，共提取2次，将2次提取液合并至25 ml容量瓶中，定容后即得可溶性糖提取液。取0.5 ml可溶性糖提取液于试管中，加入1.5 ml蒸馏水和0.5 ml蒽酮乙酸乙酯，再加入5 ml浓H2SO4，立即将试管放入沸水浴中保温1 min，冷却后在630 nm处测定吸光值，再依据蔗糖标准曲线和公式计算可溶性糖含量。

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