不同基质含水量下的番茄幼苗形态生理
摘要：以番茄品种‘石英大红’为试验材料进行春季播种实验，试从宏观与微观形态及生理指标角度探究水分对番茄幼苗的影响，诠释幼苗对水分的适应性。基质相对含水量设4个处理：90±5%，70±5%，50±5%，30±5%。结果：从形态指标看，1组，2组差异不明显，3组，4组依次降低。细胞学观察叶片厚度，栅栏、海绵组织厚度，茎粗及成熟导管孔径，结果均为1到4组逐渐降低。从1到4组，叶片下表皮气孔密度降低，差异显著，而表皮细胞与气孔增大。总之，70-80%的含水量最适合番茄幼苗生长。生理指标佐证了这一点。另外，植株的宏观与微观形态指标有一定相关性。
目录
摘要1
关键词1
Abstract1
Key words1
引言1
1□材料与方法2
1.1□试验处理 2
1.2□测定指标及方法2
1.2.1□形态指标2
1.2.2□生理指标2
1.2.3□细胞学观察2
2□结果与分析3
2.1□不同含水量处理的番茄幼苗形态指标3
2.2□不同含水量处理的番茄幼苗生理指标4
2.3□不同含水量处理的番茄幼苗细胞学观察5
3□总结与讨论8
4□致谢8
5□参考文献8
不同基质含水量下的番茄幼苗形态生理
引言
引言
番茄（Lycopersicon esculentum Mill.）是世界上首屈一指的蔬菜，而在我国的种植面积仅次于大白菜[1]。我国是世界上最大的番茄生产国，无论是面积还是总产量[2]。番茄含有丰富的Vc与番茄红素，有较高的营养价值，深受世界人民喜爱[3]。水分管理是其中举足轻重的一环，科学的水分管理既能保证植物正常生长，又能最大地减少水分散失。
水分是植物生长必不可少的元素，在适当的水分含量下，植物生长健壮，长势好；水分含量远离植物适宜水分范围时，将对植物的形态结构等方面产生影响。缺水条件会引起植物株高、茎粗、叶数、叶面积等各形态指标显著下降。曹冬梅等发现基质含水量降低会不同程度地降低安祖花的株高、冠幅、叶数、苞片数等指标[4]。关于水分对辣椒的
*好棒文|www.hbsrm.com +Q: %3^5`1^9`1^6^0`7^2#
生长生理特性以及对甜瓜苗期生理生态特性的影响的研究也表明：在一定范围内，随着基质含水量的增加，株高、茎粗、比叶面积、节间长和干物质积累量均明显增加[56]
显微观察技术在园艺植物上的运用非常广泛，比如在花生子叶不定芽的诱导中，显微观察不定芽的发生情况可衡量培养基是否合适[7]；在评价杂交稻种子的质量时，通过显微观察种子裂颖、穗发芽、带菌及夹持情况，可更准确判断种子质量好坏[8]；在茄子游离小孢子培养中，对小孢子生长分化的观察可促进人们对离体培养的了解[9]。可见显微观察对衡量植物组织细胞生长状况有重要作用，但用于衡量生长指标的研究似乎较少。
生理指标的测定技术已经非常成熟，比如叶绿素含量测定，根系活力测定，植株自由水、束缚水含量测定，SOD, POD酶活性测定等等。这些指标能有效反映植株生长速度快慢，抗逆性强弱，植株健壮与否等生长状况。为避免与前人的研究重复，小组简单测量几个有代表性的指标，以弥补形态指标的缺陷。
本试验以番茄为材料，测定不同基质含水量下，幼苗的宏观形态与微观形态有何差异，以确定基质栽培番茄的最佳含水量。同时可通过宏观，微观的形态诠释幼苗对不同基质含水量的适应性，揭示宏观形态与微观形态间的联系，为生产培育壮苗提供理论和实际依据。
1 材料与方法
1.1 试验处理
所选番茄品种为“石英大红”，2014年3月20日播种于50孔穴盘内，基质采用草炭：蛭石：珍珠岩体积比1：1：1的复合基质。穴盘置于大学生科楼玻璃温室中，相对湿度5085%，晴天光照强度2000060000lx。烘干称重法算出基质的最大持水能力为177%，以最大持水量的90%，70%，50%，30%为标准控制含水量，即处理1，2，3，4。但穴盘保水能力较弱，夏天晴天蒸发量很大，实际含水量变化为：1组：95%降至60%，2组：75%降至45%，3组：55%降至25%，4组：35%降至20%。阴雨天每盘含水量最多下降10%。每个处理重复一个穴盘。用称重法测定基质的含水量，每天用电子秤称量（精确到5g），浇水补足24h蒸发掉的水。3月15日用55℃热水消毒，之后湿纱布包裹浸种催芽，温度控制在20℃上下。20日播种，浇透基质。出苗20d后开始控制含水量。出苗40d移栽至纸杯中。
1.2 测定指标及方法
1.2.1 形态指标：材料处理17d（4月28日）测量以下指标：1、株高：直尺测量，2、茎粗：游标卡尺测量，3、叶面积：参考剪纸称重法测量[10] ，4、计算根冠质量比，5、壮苗指数：壮苗指数=茎粗/株高×全株干质量，参考王仲等人的壮苗指数测量方法[11]，全株干重用烘干法测定。前两项重复次数为10，后三项为6。
1.2.2 生理指标：材料处理2040d，测量以下指标：1、阿贝折射仪法测定植株自由水束缚水含量，参考刘向莉的方法[12]；2、愈创木酚法测定POD活力，取材第3,4片真叶，参考Omra R G.的方法[13]；3、乙醇丙酮混合液提取测定叶绿素含量，取材第1,2片真叶，参考杨德振的方法[14]。第一项重复次数为6，后两项为3。
1.2.3 细胞学观察：材料处理3050d，用飞鹰牌双面刀片（产自上海吉列公司）制作茎横切面水浸切片置于奥林巴斯牌显微镜下观察（型号CX21FS1），取材第二片真叶叶柄基部，比较各处理的茎粗及成熟导管孔径；以及叶片横切面，取材最顶部叶片，比较各处理叶片的栅栏、海绵组织、上表皮及叶片总厚度。用镊子撕取叶片下表皮，观察测量表皮细胞，气孔保卫细胞大小(最大长度)及分布密度。每个测量指标重复5次。
显微镜直接与电脑相连，用MIE3.1图像处理软件测定数据，用规格为0.10mm, 1/400mm2的血球计数板进行放大倍数标定与校正。摄影目镜放大倍数为3.3，物镜倍率分别为：叶片下表皮40倍，叶片横切10倍，茎横切4倍，根据公式：放大倍数 = 物镜倍率×摄影目镜倍率[15]，叶片下表皮，叶片横切，茎横切放大倍数分别为132, 33, 13.2。
实验数据用SPSS16.0及EXCEL2003进行单因素F检验、多重比较以及回归分析，所有数据置信度均取95% (P=0.05）。
2 结果与分析
目录
摘要1
关键词1
Abstract1
Key words1
引言1
1□材料与方法2
1.1□试验处理 2
1.2□测定指标及方法2
1.2.1□形态指标2
1.2.2□生理指标2
1.2.3□细胞学观察2
2□结果与分析3
2.1□不同含水量处理的番茄幼苗形态指标3
2.2□不同含水量处理的番茄幼苗生理指标4
2.3□不同含水量处理的番茄幼苗细胞学观察5
3□总结与讨论8
4□致谢8
5□参考文献8
不同基质含水量下的番茄幼苗形态生理
引言
引言
番茄（Lycopersicon esculentum Mill.）是世界上首屈一指的蔬菜，而在我国的种植面积仅次于大白菜[1]。我国是世界上最大的番茄生产国，无论是面积还是总产量[2]。番茄含有丰富的Vc与番茄红素，有较高的营养价值，深受世界人民喜爱[3]。水分管理是其中举足轻重的一环，科学的水分管理既能保证植物正常生长，又能最大地减少水分散失。
水分是植物生长必不可少的元素，在适当的水分含量下，植物生长健壮，长势好；水分含量远离植物适宜水分范围时，将对植物的形态结构等方面产生影响。缺水条件会引起植物株高、茎粗、叶数、叶面积等各形态指标显著下降。曹冬梅等发现基质含水量降低会不同程度地降低安祖花的株高、冠幅、叶数、苞片数等指标[4]。关于水分对辣椒的
*好棒文|www.hbsrm.com +Q: %3^5`1^9`1^6^0`7^2#
生长生理特性以及对甜瓜苗期生理生态特性的影响的研究也表明：在一定范围内，随着基质含水量的增加，株高、茎粗、比叶面积、节间长和干物质积累量均明显增加[56]
显微观察技术在园艺植物上的运用非常广泛，比如在花生子叶不定芽的诱导中，显微观察不定芽的发生情况可衡量培养基是否合适[7]；在评价杂交稻种子的质量时，通过显微观察种子裂颖、穗发芽、带菌及夹持情况，可更准确判断种子质量好坏[8]；在茄子游离小孢子培养中，对小孢子生长分化的观察可促进人们对离体培养的了解[9]。可见显微观察对衡量植物组织细胞生长状况有重要作用，但用于衡量生长指标的研究似乎较少。
生理指标的测定技术已经非常成熟，比如叶绿素含量测定，根系活力测定，植株自由水、束缚水含量测定，SOD, POD酶活性测定等等。这些指标能有效反映植株生长速度快慢，抗逆性强弱，植株健壮与否等生长状况。为避免与前人的研究重复，小组简单测量几个有代表性的指标，以弥补形态指标的缺陷。
本试验以番茄为材料，测定不同基质含水量下，幼苗的宏观形态与微观形态有何差异，以确定基质栽培番茄的最佳含水量。同时可通过宏观，微观的形态诠释幼苗对不同基质含水量的适应性，揭示宏观形态与微观形态间的联系，为生产培育壮苗提供理论和实际依据。
1 材料与方法
1.1 试验处理
所选番茄品种为“石英大红”，2014年3月20日播种于50孔穴盘内，基质采用草炭：蛭石：珍珠岩体积比1：1：1的复合基质。穴盘置于大学生科楼玻璃温室中，相对湿度5085%，晴天光照强度2000060000lx。烘干称重法算出基质的最大持水能力为177%，以最大持水量的90%，70%，50%，30%为标准控制含水量，即处理1，2，3，4。但穴盘保水能力较弱，夏天晴天蒸发量很大，实际含水量变化为：1组：95%降至60%，2组：75%降至45%，3组：55%降至25%，4组：35%降至20%。阴雨天每盘含水量最多下降10%。每个处理重复一个穴盘。用称重法测定基质的含水量，每天用电子秤称量（精确到5g），浇水补足24h蒸发掉的水。3月15日用55℃热水消毒，之后湿纱布包裹浸种催芽，温度控制在20℃上下。20日播种，浇透基质。出苗20d后开始控制含水量。出苗40d移栽至纸杯中。
1.2 测定指标及方法
1.2.1 形态指标：材料处理17d（4月28日）测量以下指标：1、株高：直尺测量，2、茎粗：游标卡尺测量，3、叶面积：参考剪纸称重法测量[10] ，4、计算根冠质量比，5、壮苗指数：壮苗指数=茎粗/株高×全株干质量，参考王仲等人的壮苗指数测量方法[11]，全株干重用烘干法测定。前两项重复次数为10，后三项为6。
1.2.2 生理指标：材料处理2040d，测量以下指标：1、阿贝折射仪法测定植株自由水束缚水含量，参考刘向莉的方法[12]；2、愈创木酚法测定POD活力，取材第3,4片真叶，参考Omra R G.的方法[13]；3、乙醇丙酮混合液提取测定叶绿素含量，取材第1,2片真叶，参考杨德振的方法[14]。第一项重复次数为6，后两项为3。
1.2.3 细胞学观察：材料处理3050d，用飞鹰牌双面刀片（产自上海吉列公司）制作茎横切面水浸切片置于奥林巴斯牌显微镜下观察（型号CX21FS1），取材第二片真叶叶柄基部，比较各处理的茎粗及成熟导管孔径；以及叶片横切面，取材最顶部叶片，比较各处理叶片的栅栏、海绵组织、上表皮及叶片总厚度。用镊子撕取叶片下表皮，观察测量表皮细胞，气孔保卫细胞大小(最大长度)及分布密度。每个测量指标重复5次。
显微镜直接与电脑相连，用MIE3.1图像处理软件测定数据，用规格为0.10mm, 1/400mm2的血球计数板进行放大倍数标定与校正。摄影目镜放大倍数为3.3，物镜倍率分别为：叶片下表皮40倍，叶片横切10倍，茎横切4倍，根据公式：放大倍数 = 物镜倍率×摄影目镜倍率[15]，叶片下表皮，叶片横切，茎横切放大倍数分别为132, 33, 13.2。
实验数据用SPSS16.0及EXCEL2003进行单因素F检验、多重比较以及回归分析，所有数据置信度均取95% (P=0.05）。
2 结果与分析
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