白鹤芋离体培养和快速繁殖条件研究
白鹤芋为天南星科白鹤芋属常绿植物，白鹤芋花姿独特，深受大众喜爱。白鹤芋常规分株方法繁殖系数低，难以快速繁殖，植物组织培养快速繁殖技术繁殖系数高，且种苗性状稳定，因此已成为白鹤芋繁殖的主要途径。为了优化白鹤芋组织培养与快速繁殖体系，提高白鹤芋商品化生产的速度，本试验以白鹤芋品种‘SPS’为试验材料，研究了不同基本培养基、不同植物生长调节剂及不同有机添加物对白鹤芋增殖的影响，结果表明白鹤芋品种‘SPS’增殖培养的最适宜培养条件为MS + 6-BA 3.0 mg/L + NAA 0.1 mg/L , 蔗糖30 g/L。
目录
摘要 1
关键词 1
Abstract 1
Key words1
1 材料与方法 2
1.1试验材料 2
1.1.1 植物材料 2
1.1.2 培养基 2
1.2试验方法 2
1.2.1 白鹤芋的增殖 2
1.2.2 不同条件对白鹤芋增殖的影响 2
1.2.3 数据统计与分析 3
2 结果与分析 3
2.1白鹤芋的增殖 3
2.2 不同基本培养基对白鹤芋增殖的影响 3
2.3 不同细胞分裂素对白鹤芋增殖的影响 4
2.4 不同浓度NAA对白鹤芋增殖的影响 4
2.5 不同有机添加物对白鹤芋增殖的影响 5
3 讨论 5
4 结论 6
致谢 6
参考文献 7 白鹤芋离体培养和快速繁殖条件研究
引言
白鹤芋又名白掌、白苞芋、一帆风顺，原产哥伦比亚，是天南星科白鹤芋属多年生常绿草本植物，有100多个栽培品种[1]，其叶色浓绿，花姿独特，花型为佛焰苞式，多为白色或微绿色，肉穗花序乳黄色，花期长，耐阴性强，是室内优良的观花和观叶植物，白鹤芋多为盆栽，也可以在花台、花境、庭院等景观中丛植或列植进行点缀装扮，可在荫蔽处起到绿化作用；此外，它可以过滤空气中的苯、三氯乙烯、甲醛等有害气体及挥发性有机物，能够有效的净化空气，具有较高的观赏价值和经济价值，目前在国内各地均有栽培[2]。我国从20世纪80年代末开始引种白鹤芋，并投入 *好棒文|www.hbsrm.com +Q: ￥351916072￥
小规模生产[3]。近年来，随着我国人民生活水平的提高，白鹤芋一直供不应求[4]。白鹤芋多数品种花粉退化，栽培不易结籽，因而常规技术主要为通过分株方法繁殖，繁殖速度慢，阻碍了白鹤芋规模化和商品化生产[5]，而通过组培方法可以在短期内扩繁大量无菌苗[6]，且种苗整齐度高、质量好，能极大满足市场需求。本研究的主要目的在于优化白鹤芋组织培养与快速繁殖体系，提高白鹤芋商品化生产的速度，探索出小株型白鹤芋品种‘SPS’离体培养快速繁殖的最佳条件。影响白鹤芋组织培养繁殖速度的因素有：①基本培养基:目前，白鹤芋组织培养常用的基本培养基有MS、1/2 MS、B5、N6。②植物生长调节剂：目前，白鹤芋组织培养常用的细胞分裂素为6BA（6苄基腺嘌呤）、KT(激动素)，常用的生长素为NAA（萘乙酸）。普遍认为低浓度的生长素和较高浓度的细胞分裂素配合使用有利于芽的分化与增殖，也有利于白鹤芋外植体愈伤组织的诱导。③有机添加物：白鹤芋组织培养中常用的有机添加物有蔗糖、椰汁及香蕉泥。目前，白鹤芋组织培养增殖条件已有相关报道，但不同品种间存在一定的差异。作者所在实验室在白鹤芋的离体培养快速繁殖技术研究中已经探讨了不同植物生长调节剂对白鹤芋离体培养的影响。本试验拟在现有工作基础上进一步研究不同基本培养基、不同浓度6BA、不同浓度KT及不同浓度NAA以及不同有机添加物对小株型白鹤芋‘SPS’品种无菌苗增殖的影响，以建立适合于小株型白鹤芋‘SPS’品种及类似品种的繁殖条件，为白鹤芋种苗的规模化生产提供技术基础，推动白鹤芋无菌苗的工厂化生产进程。
1 材料与方法
1．1 试验材料
1．1．1 植物材料
试验在大学园艺学院组织培养实验室进行。取小株型白鹤芋品种‘SPS’盆栽苗侧芽建立无菌系，待无菌苗经过几代培养恢复长势后，选取生长健壮、长势一致、健康无污染的无菌苗，切除根、侧芽及长势较弱的叶片后，作为各处理的试验材料。
1．1．2 培养基
MS + 6BA 3.0 mg/L + NAA 0.1 mg/L + 蔗糖30 g/L+琼脂7.0 g/L为试验材料基本增殖培养基，在此基础上，更换不同的基本培养基、不同浓度的6BA、不同浓度的KT，不同浓度的NAA及不同的有机添加物，pH5.6~5.8，按常规方法配制，每瓶分装培养基约为50ml。
1．2 试验方法
1.2.1 白鹤芋的增殖
将所有白鹤芋无菌苗切除根、侧芽及长势较弱的叶片后，接种在基本增殖培养基上，培养基配方为：MS + 6BA 3.0mg/L + NAA 0.1 mg/L + 蔗糖30 g/L+ 琼脂7.0 g/L，pH5.7，每次生长一个月，再转接，转接3次。每次接种时切除根、侧芽及长势较弱的叶片，使所有白鹤芋无菌苗大小和长势一致，达到控制变量的效果，培养条件：大学园艺学院组织培养实验室，温度(25±2)℃，光照时间12h/d，光照强度2000lx。白鹤芋无菌苗只对本次试验的基本培养基、植物生长调节剂以及有机添加物处理反应。
1.2.2 不同条件对白鹤芋增殖的影响
(1)不同基本培养基对白鹤芋增殖的影响
选取长势一致、健壮无污染的白鹤芋离体无菌苗，切除根、侧芽及老叶后分别转接至不同种类的基本培养基的增殖培养基中，设置基本培养基为：MS、1/2MS、B5、N6，共4个处理，分别编号M1，M2，M3和M4。添加6BA 3.0 mg/L、NAA 0.1 mg/L、蔗糖30 g/L、琼脂7 g/L，其中pH5.7，每种基本培养基处理均配制10份培养基，每份培养基上接种4株白鹤芋无菌苗，放入组织培养实验室生长。
(2)不同浓度6BA对白鹤芋增殖的影响
选取长势一致、健壮无污染的白鹤芋离体无菌苗，切除根、侧芽及老叶后分别转接至不同浓度6BA的增殖培养基中，设置单一生长调节剂6BA浓度分别为1.0、2.0、3.0、4.0 mg/L，共4个处理，分别编号A1，A2，A3，A4，基本培养基成分为MS，添加NAA 0.1 mg/L 、蔗糖30 g/L、琼脂7.0 g/L，其中pH5.7，每种6BA浓度处理均配制10份培养基，每份培养基上接种4株白鹤芋无菌苗，放入组织培养实验室生长。
(3)不同浓度KT对白鹤芋增殖的影响
选取长势一致、健壮无污染的白鹤芋离体无菌苗，切除根、侧芽及老叶后分别转接至不同浓度KT的增殖培养基中，设置KT浓度分别为 0.05、0.10、0.15和0.20 mg/L，共4个处理，分别编号K1，K2，K3，K4。基本培养基成分为MS，添加NAA 0.1 mg/L、蔗糖30 g/L、琼脂7.0 g/L，其中pH5.7，每种KT浓度处理均配制10份培养基，每份培养基上接种4株白鹤芋无菌苗，放入组织培养实验室生长。
目录
摘要 1
关键词 1
Abstract 1
Key words1
1 材料与方法 2
1.1试验材料 2
1.1.1 植物材料 2
1.1.2 培养基 2
1.2试验方法 2
1.2.1 白鹤芋的增殖 2
1.2.2 不同条件对白鹤芋增殖的影响 2
1.2.3 数据统计与分析 3
2 结果与分析 3
2.1白鹤芋的增殖 3
2.2 不同基本培养基对白鹤芋增殖的影响 3
2.3 不同细胞分裂素对白鹤芋增殖的影响 4
2.4 不同浓度NAA对白鹤芋增殖的影响 4
2.5 不同有机添加物对白鹤芋增殖的影响 5
3 讨论 5
4 结论 6
致谢 6
参考文献 7 白鹤芋离体培养和快速繁殖条件研究
引言
白鹤芋又名白掌、白苞芋、一帆风顺，原产哥伦比亚，是天南星科白鹤芋属多年生常绿草本植物，有100多个栽培品种[1]，其叶色浓绿，花姿独特，花型为佛焰苞式，多为白色或微绿色，肉穗花序乳黄色，花期长，耐阴性强，是室内优良的观花和观叶植物，白鹤芋多为盆栽，也可以在花台、花境、庭院等景观中丛植或列植进行点缀装扮，可在荫蔽处起到绿化作用；此外，它可以过滤空气中的苯、三氯乙烯、甲醛等有害气体及挥发性有机物，能够有效的净化空气，具有较高的观赏价值和经济价值，目前在国内各地均有栽培[2]。我国从20世纪80年代末开始引种白鹤芋，并投入 *好棒文|www.hbsrm.com +Q: ￥351916072￥
小规模生产[3]。近年来，随着我国人民生活水平的提高，白鹤芋一直供不应求[4]。白鹤芋多数品种花粉退化，栽培不易结籽，因而常规技术主要为通过分株方法繁殖，繁殖速度慢，阻碍了白鹤芋规模化和商品化生产[5]，而通过组培方法可以在短期内扩繁大量无菌苗[6]，且种苗整齐度高、质量好，能极大满足市场需求。本研究的主要目的在于优化白鹤芋组织培养与快速繁殖体系，提高白鹤芋商品化生产的速度，探索出小株型白鹤芋品种‘SPS’离体培养快速繁殖的最佳条件。影响白鹤芋组织培养繁殖速度的因素有：①基本培养基:目前，白鹤芋组织培养常用的基本培养基有MS、1/2 MS、B5、N6。②植物生长调节剂：目前，白鹤芋组织培养常用的细胞分裂素为6BA（6苄基腺嘌呤）、KT(激动素)，常用的生长素为NAA（萘乙酸）。普遍认为低浓度的生长素和较高浓度的细胞分裂素配合使用有利于芽的分化与增殖，也有利于白鹤芋外植体愈伤组织的诱导。③有机添加物：白鹤芋组织培养中常用的有机添加物有蔗糖、椰汁及香蕉泥。目前，白鹤芋组织培养增殖条件已有相关报道，但不同品种间存在一定的差异。作者所在实验室在白鹤芋的离体培养快速繁殖技术研究中已经探讨了不同植物生长调节剂对白鹤芋离体培养的影响。本试验拟在现有工作基础上进一步研究不同基本培养基、不同浓度6BA、不同浓度KT及不同浓度NAA以及不同有机添加物对小株型白鹤芋‘SPS’品种无菌苗增殖的影响，以建立适合于小株型白鹤芋‘SPS’品种及类似品种的繁殖条件，为白鹤芋种苗的规模化生产提供技术基础，推动白鹤芋无菌苗的工厂化生产进程。
1 材料与方法
1．1 试验材料
1．1．1 植物材料
试验在大学园艺学院组织培养实验室进行。取小株型白鹤芋品种‘SPS’盆栽苗侧芽建立无菌系，待无菌苗经过几代培养恢复长势后，选取生长健壮、长势一致、健康无污染的无菌苗，切除根、侧芽及长势较弱的叶片后，作为各处理的试验材料。
1．1．2 培养基
MS + 6BA 3.0 mg/L + NAA 0.1 mg/L + 蔗糖30 g/L+琼脂7.0 g/L为试验材料基本增殖培养基，在此基础上，更换不同的基本培养基、不同浓度的6BA、不同浓度的KT，不同浓度的NAA及不同的有机添加物，pH5.6~5.8，按常规方法配制，每瓶分装培养基约为50ml。
1．2 试验方法
1.2.1 白鹤芋的增殖
将所有白鹤芋无菌苗切除根、侧芽及长势较弱的叶片后，接种在基本增殖培养基上，培养基配方为：MS + 6BA 3.0mg/L + NAA 0.1 mg/L + 蔗糖30 g/L+ 琼脂7.0 g/L，pH5.7，每次生长一个月，再转接，转接3次。每次接种时切除根、侧芽及长势较弱的叶片，使所有白鹤芋无菌苗大小和长势一致，达到控制变量的效果，培养条件：大学园艺学院组织培养实验室，温度(25±2)℃，光照时间12h/d，光照强度2000lx。白鹤芋无菌苗只对本次试验的基本培养基、植物生长调节剂以及有机添加物处理反应。
1.2.2 不同条件对白鹤芋增殖的影响
(1)不同基本培养基对白鹤芋增殖的影响
选取长势一致、健壮无污染的白鹤芋离体无菌苗，切除根、侧芽及老叶后分别转接至不同种类的基本培养基的增殖培养基中，设置基本培养基为：MS、1/2MS、B5、N6，共4个处理，分别编号M1，M2，M3和M4。添加6BA 3.0 mg/L、NAA 0.1 mg/L、蔗糖30 g/L、琼脂7 g/L，其中pH5.7，每种基本培养基处理均配制10份培养基，每份培养基上接种4株白鹤芋无菌苗，放入组织培养实验室生长。
(2)不同浓度6BA对白鹤芋增殖的影响
选取长势一致、健壮无污染的白鹤芋离体无菌苗，切除根、侧芽及老叶后分别转接至不同浓度6BA的增殖培养基中，设置单一生长调节剂6BA浓度分别为1.0、2.0、3.0、4.0 mg/L，共4个处理，分别编号A1，A2，A3，A4，基本培养基成分为MS，添加NAA 0.1 mg/L 、蔗糖30 g/L、琼脂7.0 g/L，其中pH5.7，每种6BA浓度处理均配制10份培养基，每份培养基上接种4株白鹤芋无菌苗，放入组织培养实验室生长。
(3)不同浓度KT对白鹤芋增殖的影响
选取长势一致、健壮无污染的白鹤芋离体无菌苗，切除根、侧芽及老叶后分别转接至不同浓度KT的增殖培养基中，设置KT浓度分别为 0.05、0.10、0.15和0.20 mg/L，共4个处理，分别编号K1，K2，K3，K4。基本培养基成分为MS，添加NAA 0.1 mg/L、蔗糖30 g/L、琼脂7.0 g/L，其中pH5.7，每种KT浓度处理均配制10份培养基，每份培养基上接种4株白鹤芋无菌苗，放入组织培养实验室生长。
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