不同鸡爪槭在春夏秋三个季节光合特性的变化(附件)

摘要:研究彩叶植物的光合特性有着重要的理论价值和现实意义,目前对于这类特殊叶色植物的光合及相关生理特性的研究还较少。本研究以彩叶植物中的金陵黄枫、日本红枫、普通鸡爪槭为材料,测定春、夏、秋3 个季节的净光合作用速率(Pn)、气孔导度(Gs)、胞间CO2 浓度(Ci)、蒸腾速率(Tr)、水分利用率(WUE)、叶绿素含量、可溶性糖含量。结果表明:3种彩叶植物的净光合速率日变化均呈不对称的双峰曲线,存在光合“午休”现象。3种彩叶植物光合速率受到Gs、Tr、Ci的共同作用,还受到叶绿素含量的直接影响,进而影响可溶性糖的含量。本研究旨在为彩叶树种的引种及栽培提供科学依据。
目录
摘要1
关键词1
Abstract1
Key words1
引言2
1材料与方法2
1.1试验材料 2
1.2试验设计 2
1.3试验方法2
2结果与分析3
2.1不同季节金陵黄枫与日本红枫、普通鸡爪槭光合作用日变化比较
3
2.2不同季节金陵黄枫与日本红枫、普通鸡爪槭的基本光合指标比较
7
2.3不同季节金陵黄枫与日本红枫、普通鸡爪槭叶绿素含量与可溶性糖含量研究
9
讨论 10
致谢12
参考文献13
不同鸡爪槭在春夏秋三个季节光合特性的变化
引言
引言 彩叶植物是指叶色与自然绿色有明显区别,并且具有良好观赏价值植物的总称[1],也可将彩叶植物描述为在整个生长季节或生长季节的某一阶段全部或部分叶片较稳定地呈现非绿色的植物[2],因具有叶色鲜艳、观赏期长,能够与周边环境相协调,易于形成大色块景观,创造出独特景观的特点,在现代园林中有重要的地位[34],鸡爪槭就是其中著名的代表。鸡爪槭叶形美观,秋日叶红,灿烂似朝霞,风姿极佳,为著名观赏树种[5],在我国早已引种栽培,且变种和变型很多[6]。日本是鸡爪槭栽培和品种选育研究历史最长的国家,已经培育出数百个园艺品种,广泛应用于公园、庭园和盆景栽培,并被大量引种到欧美各国。因此,在国际园艺界也将鸡爪槭及其园艺品种统称为日本枫树( Japane
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se maple) [78]。随着我国社会经济的发展,人们对环境绿化美化的景观要求不断提高,鸡爪槭园艺品种的园林应用越来越多。但普通鸡爪槭在11月前后叶色转为橙红,生长季内叶片呈绿色,且日灼危害较重,这在一定程度上影响了这一名贵树种的观赏价值[9]。而且国内鸡爪槭研究起步较晚,自主选育品种很少,应用的园艺品种大多从国外引种,且品种混杂,名称混乱,缺乏品种分类、栽培管理等方面的规范,与国外先进国家相比还存在很大差距[10]。
不同植物的光合日变化进程存在差异,同一植物光合日变化的进程也受其所处的环境条件的影响[11]。已有的一些研究认为,彩叶植物的光合日变化曲线类型同绿叶植物没有显著差异,但是净光合速率同绿叶植物存在显著差异[12]。本试验以普通鸡爪槭(一直为绿色),日本红枫(春秋为红色,夏季反绿),金陵黄枫(一直为黄色)为实验材料研究不同季节其光合日变化的规律,盛夏气孔导度的变化(一些研究表明,当叶片暴露在可对光系统造成损伤的高温时,气孔导度仍稳定在很高水平[1314]),分析其光合指标与主要生理生态因子的关系,推断三种鸡爪槭耐热性的差别。不仅可以丰富植物光合生态生理的理论,更有助我们更好的了解这类特殊的植物,以期为3种鸡爪槭的引种驯化、栽培应用提供依据[15]。
1材料与方法
1.1试验材料
本试验在江苏省农业科学研究院种质资源圃进行。供试材料为长势相近的三个鸡爪槭品种:普通鸡爪槭(一直为绿色),日本红枫(春秋为红色,夏季反绿)以及新品种金陵黄枫(一直为黄色),生长环境和日常管理均一致,生长状况良好,无病虫害。
1.2试验设计
从2014年开始,分别在春(5月上旬)、夏(7月上旬)、秋(9月中旬)三个季节进行试验。每次试验选取三个晴天进行测定。选取生长状况基本一致的鸡爪槭,测定无病虫害、生长健壮、受光良好的叶片。采用美国公司生产的LI6400便携式光合测定系统进行测定。
在每次光合试验结束后进行取材。采用典型选样法,采集样株上相同叶位、生长正常、无损伤和无畸形现象、面积大小能代表该立地平均水平的成熟叶片供作测试材料。在样株的上层,在各个方位各采摘一定数量叶片,放入冰盒内带回实验室,进行生理指标的测定。
1.3试验方法
1.3.1光合指标的测定
从7:00一17:00每隔2h在完全模拟自然的条件下,测定各项指标,同时测量净光合速率(Pn)、气孔导度(Gs)、蒸腾速率(Tr)、胞间CO2浓度(Ci)等生态、生理参数。每次测定3次重复,取平均值。水分利用效率WUE=Pn/Tr。
上午9:00一10:00左右是试验材料光合能力较高的时期,模拟当时的自然条件,测定净光合速率(Pn)、气孔导度(Gs)、蒸腾速率(Tr)、胞间C02浓度(Ci)等参数。每次测定3次重复,取平均值。
1.3.2叶绿素含量测定:
叶绿素(Chlorophyll,Chl.)含量的测定:将新鲜叶片去掉主脉剪成细丝状,称取0.2g加入20mL提取液(丙酮:无水乙醇=1)避光浸提24h后,测定440nm、645nm、663nm的OD值。计算叶绿素 a(Chl.a)、叶绿素 b(Chl.b)和类胡萝卜素(Car.)含量,叶绿素总量(Chl)=Chla+Chlb,重复3次。
1.3.3可溶性糖含量测定:
蒽酮法[16}测定可溶性糖,将新鲜叶片去掉主脉碎,称取0.51.0g样品,放入大试管中,加入15 mL蒸馏水,在沸水浴中煮沸20min,取出冷却,过滤入100mL容量瓶中,用蒸馏水冲洗残渣数次,定容至刻度。
标准曲线制作,取6支大试管,从05分别编号,加入蒽酮试剂、蒸馏水、葡萄糖溶液。将各管快速摇动混匀后,在沸水浴中煮 10 min ,取出冷却,在620 nm 波长下,用空白调零测定光密度,以光密度为纵坐标,含葡萄糖量(μg)为横坐标绘制标准曲线。
样品测定,取待测样品提取液 1.0mL加蒽酮试剂5 mL,同以上操作显色测定光密度。重复3次。
计算可溶性糖含量,可溶性糖含量(%)=从标准曲线查得糖的量(μg)×提取液体积(mL)×稀释倍数/[测定用样品液的体积(mL)×样品重量(g)×106]×100。

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